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导读

作为一名合格的“抗衰达人”,怎能不对日新月异的延寿科技了如指掌?

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得益于学生时代生物试卷的填空题:“蛋白质是生命的物质基础,是生命活动的主要承担者,没有蛋白质就没有生命……”让这句“真理”烂熟于心。但对生物体而言,蛋白质真的是越多越好吗?上月末,一篇发表于国际顶尖期刊《Nature》的重磅研究为我们带来了答案。

来自德国科隆大学的学者们以模式生物秀丽线虫作为研究对象,发现衰老会导致线虫体内泛素化水平下降,造成蛋白质的识别与降解过程受阻。当使用基因敲除疗法加快蛋白质清除后,线虫衰老状况得到改善,平均寿命最长可被延长21%[1]。

图注:该研究以全文形式于2021年7月28日发表于《Nature》

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衰老诱导去泛素化,幕后黑手竟是它?

催化各种生化反应、参与物质传递、构成细胞骨架……对真核生物而言,蛋白质扮演极为重要的角色。一个蛋白用久了,难免要“更新换代”,这些“老旧”蛋白在连接酶的参与下,会被一种名为泛素的小蛋白打上标签,等待后期被识别、降解。

但同时,这条流水线上“贴标签”的过程也是可逆的,去泛素化便能逆转泛素化过程。

本来,泛素与去泛素化酶志趣相投、一拍即合,一直合作得还算不错:需要降解的蛋白,泛素赶紧给做个记号,偶尔出差错也不怕,去泛素化酶赶来救场。然而,当生物步入衰老,整体组织系统大不如从前,这种默契的完美关系也出现了裂痕。

图注:泛素化与去泛素化过程

为研究衰老与泛素化之间的潜在关联,本次研究对不同年龄阶段(幼年、中年与老年)野生型线虫体内蛋白质组的泛素化程度进行测定。与基础水平相比,线虫在成年5日后,体内绝大部分蛋白质组(约84%泛素化水平出现下调

图注:泛素化蛋白质组随年龄增长的变化

而后续分析表明,老年野生型线虫无论是泛素编码基因的表达,还是泛素化蛋白的总水平,都与幼年线虫相当,甚至表现更好。这说明衰老诱导的低泛素化问题与泛素化过程是无关的,即泛素并未忘记给蛋白质“贴标签”。

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图注:衰老野生型线虫的泛素化缺失与泛素本身的表达无关

既然原因没出在内部,那必定要去外界找找。由于泛素化过程中泛素连接酶的活性几乎不随年龄变化[2],于是研究人员推测大概率是去泛素化酶在从中作梗了。

结果还真是这样,利用基因编辑技术敲除去泛素化酶表达基因后,老年野生型线虫的蛋白质泛素化水平被极大改善。并且若直接使用抑制剂PR-619降低去泛素化酶活性,老年线虫的健康状况也得到改善,寿命直接被延长

图注:单次敲除去泛素化酶表达基因

改善了衰老线虫的泛素化蛋白水平;

抑制去泛素酶活性后线虫获得延寿效果

去泛素化酶四处点火,蛋白酶体昏头转向

对于“老旧”蛋白质而言,如果说泛素是“标签”,泛素连接酶是“胶水”,去泛素化酶在“撕标签”,那么蛋白酶体就是用来降解蛋白的“车间”,大家共同组成了细胞内蛋白质降解的主要途径——泛素-蛋白酶体系统[3]

图注:泛素-蛋白酶体系统,源自[3]

当蛋白质无法正常被泛素化,作为后端操作的蛋白酶体自然是晕头转向,哪里能识别、降解得了“垃圾”蛋白?正因如此,衰老线虫体内被观测到多达192种低泛素化蛋白的堆积。

不过,想要恢复泛素-蛋白酶体系统正常运转,也并非无计可施。这次研究还同时设置了饮食限制低胰岛素/IGF-1信号横向比较组,去探究两种“长寿通径”是否对蛋白质组泛素化存在影响。

令人惊喜的是,衰老导致的蛋白质泛素化水平下调现象因“长寿通径”得到逆转热量限制的线虫在衰老过程中去泛素化程度较低,而在低胰岛素/IGF-1信号组中,泛素化蛋白质比例甚至出现上调

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图注:蛋白质组泛素化水平因热量限制与低胰岛素/IGF-1信号被逆转

饮食限制降低胰岛素/IGF-1信号被认为对多种生物的寿命延长有显著效果[4, 5],而这次试验的发现也再次稳固了两者在抗衰领域的显赫地位。

对“长寿通径“的回春大法,研究也给出了解释:两者均被发现能维持与年龄相关的去泛素化酶正常水平,使蛋白质组能够正常被泛素化。

此外,低胰岛素/IGF-1信号能够激活FOXO1转录因子上调E3泛素连接酶表达,增加泛素化水平,促进受损蛋白的周转[6]。FOXO通路被激活后,又会抑制mTORC1[7]、激活AMPK信号通路[8],促进泛素-蛋白酶体过程。

饮食限制可能起到了相似作用——帮助泛素连接酶过表达[9],维持机体蛋白质稳态[10]。

敲除特定蛋白酶体靶点,

线虫轻松延寿21%!

为了找到蛋白酶体“失联“对象中影响寿命的关键靶点,借助基因魔剪Crisper-cas9[11],包括IFB-2EPS-8RPL-4在内的10个蛋白酶体识别靶点被点名出列。

其中,IFB-2EPS-8位点尤为引人注目,虽然它们对线虫早期正常发育生长有促进作用[12, 13],但当线虫成年后,IFB-2EPS-8蛋白就用处不大了,还随着线虫衰老呈现聚集趋势,原因便是下降的泛素化水平阻碍了蛋白酶体的识别和降解

正如“水满则溢,月盈则亏”,蛋白质也不是越多越好。当衰老导致内源性IFB-2蛋白大量聚集错误分布时,会造成肠道完整性丧失,增加细菌侵入[14, 15]。

图注:IFB-2蛋白水平过高会引起与年龄相关的肠道完整性丧失

同时,EPS-8过表达会促使细胞RAC通路过度激活,诱导蛋白激酶JNK磷酸化,影响细胞周期调控[16],并可能造成肌动蛋白过度聚合重塑,使得肌细胞呈现无组织的肌动蛋白丝,损害机体正常活动与寿命[17]。

图注:增加的EPS-8蛋白通过RAC过度激活缩短寿命

事实上,IFB-2EPS-8蛋白低泛素化的个体也确实表现出短寿特征。

图注:低泛素化影响IFB-2与EPS-8蛋白在体内周转,并极大缩短了线虫的寿命

对于成年线虫而言,像IFB-2、EPS-8这样,机体不需要未被及时清除冗余蛋白简直是“毒蛋白“!如果通过基因敲除法彻底沉默它们,会怎样呢?结果是:有显著延寿效果,最高可延长21%寿命

图注:成年后,敲除IFB-2和EPS-8基因有显著延寿作用

时光派点评

衰老与蛋白质组稳态关联算不上是个新鲜领域,尤其是泛素-蛋白酶体系统,相当数量的研究已经对其内部物质运输、信号传递等来龙去脉进行了梳理[18, 19]。看似在“炒隔夜饭”,实则很多底层问题还没搞明白,就比如蛋白质组泛素化随年龄的变化及其对寿命的意义。

究竟是泛素化水平高,及时清除“垃圾”蛋白益于延寿,还是低泛素化程度指示了体内蛋白质得到了及时修复,帮助延长寿命?一方面,蛋白质周转速率加快有助于及时清除机体冗余蛋白,而另一方面,过快的清除机制也可能造成组织负担,加速系统的衰老,那么这个临界点又在何处?

关于衰老与蛋白质周转速率的关系,可能短期还无法下个定论。但这项研究建立了衰老与泛素修饰蛋白间的联系,可能为最终解决这一问题提供了新思路。同时,研究还惊喜发现了两个极为优秀的蛋白酶体靶点(IFB-2与EPS-8),它们或许是人类正寻找的下一个抗衰靶标。

—— TIMEPIE ——

参考文献

[1] Koyuncu, S., Loureiro, R., Lee, H. J., Wagle, P., Krueger, M., & Vilchez, D. (2021). Rewiring of the ubiquitinated proteome determines ageing in C. elegans. Nature, 10.1038/s41586-021-03781-z. Advance online publication. https://doi.org/10.1038/s41586-021-03781-z

[2] Papaevgeniou, N., & Chondrogianni, N. (2014). The ubiquitin proteasome system in Caenorhabditis elegans and its regulation. Redox biology, 2, 333–347. https://doi.org/10.1016/j.redox.2014.01.007

[3] Ubiquigent | The Ubiquitin System. (2021). Retrieved 6 August 2021, from https://www.ubiquigent.com/the-ubiquitin-system/

[4] Phelan, J. P., & Rose, M. R. (2005). Why dietary restriction substantially increases longevity in animal models but won't in humans. Ageing research reviews, 4(3), 339–350. https://doi.org/10.1016/j.arr.2005.06.001

[5] Altintas, O., Park, S., & Lee, S.-J. V. (2016). The role of insulin/IGF-1 signaling in the longevity of model invertebrates, C. elegans and D. melanogaster. BMB Reports, 49(2), 81–92. https://doi.org/10.5483/bmbrep.2016.49.2.261

[6] Balaji, V., Pokrzywa, W., & Hoppe, T. (2018). Ubiquitylation Pathways In Insulin Signaling and Organismal Homeostasis. BioEssays : news and reviews in molecular, cellular and developmental biology, 40(5), e1700223. https://doi.org/10.1002/bies.201700223

[7] Chen, C. C., Jeon, S. M., Bhaskar, P. T., Nogueira, V., Sundararajan, D., Tonic, I., Park, Y., & Hay, N. (2010). FoxOs inhibit mTORC1 and activate Akt by inducing the expression of Sestrin3 and Rictor. Developmental cell, 18(4), 592–604. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2010.03.008

[8] Li XN, Song J, Zhang L, et al. Activation of the AMPK-FOXO3 pathway reduces fatty acid-induced increase in intracellular reactive oxygen species by upregulating thioredoxin. Diabetes. 2009;58(10):2246-2257. doi:10.2337/db08-1512

[9] Papaevgeniou, N., & Chondrogianni, N. (2014). The ubiquitin proteasome system in Caenorhabditis elegans and its regulation. Redox biology, 2, 333–347. https://doi.org/10.1016/j.redox.2014.01.007

[10] Koga, H., Kaushik, S., & Cuervo, A. M. (2011). Protein homeostasis and aging: The importance of exquisite quality control. Ageing research reviews, 10(2), 205–215. https://doi.org/10.1016/j.arr.2010.02.001

[11] Cong, L., & Zhang, F. (2015). Genome engineering using CRISPR-Cas9 system. Methods in molecular biology (Clifton, N.J.), 1239, 197–217. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-1862-1_10

[12] Karabinos, A., Schünemann, J., & Weber, K. (2004). Most genes encoding cytoplasmic intermediate filament (IF) proteins of the nematode Caenorhabditis elegans are required in late embryogenesis. European journal of cell biology, 83(9), 457–468. https://doi.org/10.1078/0171-9335-00407

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[16] Mack, N. A., Whalley, H. J., Castillo-Lluva, S., & Malliri, A. (2011). The diverse roles of Rac signaling in tumorigenesis. Cell cycle (Georgetown, Tex.), 10(10), 1571–1581. https://doi.org/10.4161/cc.10.10.15612

[17] Scita, G., Tenca, P., Areces, L. B., Tocchetti, A., Frittoli, E., Giardina, G., Ponzanelli, I., Sini, P., Innocenti, M., & Di Fiore, P. P. (2001). An effector region in Eps8 is responsible for the activation of the Rac-specific GEF activity of Sos-1 and for the proper localization of the Rac-based actin-polymerizing machine. The Journal of cell biology, 154(5), 1031–1044. https://doi.org/10.1083/jcb.200103146

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[19] Foot, N., Henshall, T., & Kumar, S. (2017). Ubiquitination and the Regulation of Membrane Proteins. Physiological reviews, 97(1), 253–281. https://doi.org/10.1152/physrev.00012.2016

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