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撰文 | 存中一贯

增强子(enhancers) 是调控基因表达的一种主要的DNA元件,它们一般距离目标基因的启动子具有很长的一段距离。自从增强子被发现之后,一个持续的争论便是由增强子转录形成的增强子RNA(enhancer RNA,eRNA) 在基因调控中是否具有特定的作用【1,2】。目前的研究显示,eRNA的转录是增强子活性的一个标志,在整个基因组中,eRNA的转录与增强子相邻基因的转录之间也存在一定联系,即eRNA的转录总是发生在这些基因转录之前【3,4】。也有研究显示,敲低eRNA会影响增强子上转录因子结合、表观遗传修饰等特征。一些转录因子以及表观遗传修饰酶能够与eRNA和增强子结合,但目前对于eRNA怎么调控增强子的活性还缺乏一致的结论

近日,来自美国德克萨斯大学安德森癌症中心的Blaine Bartholomew带领团队在Molecular Cell杂志发表了他们最新的研究成果,题目是Enhancer switching in cell lineage priming is linked to eRNA, Brg1’s AT-hook, and SWI/SNF recruitment, 他们系统探究了增强子转录产物eRNA对于增强子活性的调控机制,发现SWI/SNF复合物中催化亚基BRG1含有一个AT-hook功能结构域,这个结构域能够与eRNA结合并调控增强子的活性。

此前有报道显示,Brg1含有RNA结合结构域,比如HAS,BRK等,但是这些结构域是否调控增强子活性并不清楚。除了这些结构域之外,Brg1还有另外一个AT-hook结构域,这个结构域以Arg-Gly-Arg为核心,在其核心一端或者两端存在脯氨酸,这个结构域能够结合DNA,并介导Brg1与染色体的结合。

研究人员利用CUT&RUN分析了Brg1在基因组中的定位,发现在naïve-stage和primed-stage阶段,Brg1定位在基因间以及内含子区域,可能是基因组顺式调控元件。在基因间和内含子区域,大部分Brg1的检测峰需要AT-hook的存在。依赖于AT-hook的Brg1结合主要发生在阶段特异的基因间和内含子区域,而不是在整个naïve-stage和primed-stage阶段。进一步的检测发现,AT-hook结构域更容易结合RNA而不是DNA,其中,两个Arg残基在结合RNA中发挥了关键作用。

之后,研究人员利用转录抑制剂检测发现,抑制剂导致Brg1在naïve-stage和primed-stage阶段基因间和内含子区域结合减弱,当AT-hook结构域被删除后,Brg1结合丧失,这说明AT-hook介导的Brg1招募是转录需要的。抑制剂导致的Brg1结合减弱区域,RNAPII丰度同样减弱。

研究人员利用RIP-seq对能够和AT-hook结合的RNA进行了分析。通过免疫亲和层析,研究人员对野生以及AT删除突变两个样品中与Brg1结合的RNA进行了检测和分析,发现与野生Brg1结合的RNA大多来自基因间和内含子区域转录生成的RNA,检测到的大多数RNA需要AT-hook结构域,仅有一部分RNA能够与野生以及突变Brg1都结合,另外还有一些RNA仅与突变Brg1结合。

接下来,研究人员还发现,一些转录共激活因子比如MLL3/4, Med1以及HDK27ac修饰的检测峰也定位在基因间和内含子区域,说明这些因子对于增强子的活化具有重要作用。实验显示,这些共激活因子在阶段特异的基因间和内含子区域的结合需要Brg1的AT-hook结构域,Brg1通过其AT-hook结构域招募这些共激活因子到增强子区域促进了增强子的作用。

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综上,本研究发现增强子转录的eRNA通过与Brg1上的AT-hook结构域结合促进了一些共激活因子的招募,促进了增强子的活性,为深入理解增强子的活性调控提供了新的见解和思路。

参考文献

1. De Santa, F., Barozzi, I., Mietton, F., Ghisletti, S., Polletti, S., Tusi, B.K., Muller, H., Ragoussis, J., Wei, C.L., and Natoli, G. (2010). A large fraction of extragenic RNA Pol II transcription sites overlap enhancers.PLoS Biol. 8, e1000384.

2. Kim, T.K., Hemberg, M., Gray, J.M., Costa, A.M., Bear, D.M., Wu, J., Harmin, D.A., Laptewicz, M., Barbara-Haley, K., Kuersten, S., et al. (2010). Widespread transcription at neuronal activity-regulated enhancers.Nature465, 182–187.

3. Tyssowski, K.M., DeStefino, N.R., Cho, J.H., Dunn, C.J., Poston, R.G., Carty, C.E., Jones, R.D., Chang, S.M., Romeo, P., Wurzelmann, M.K., et al. (2018). Different Neuronal Activity Patterns Induce Different Gene Expression Programs.Neuron98, 530–546.e11.

4. Andersson, R., Gebhard, C., Miguel-Escalada, I., Hoof, I., Bornholdt, J., Boyd, M., Chen, Y., Zhao, X., Schmidl, C., Suzuki, T., et al. (2014). An atlas of active enhancers across human cell types and tissues.Nature507, 455–461.

https://doi.org/10.1016/j.molcel.2024.03.013