人G蛋白偶联受体家族C5组成员(GPRC5A)ELISA试剂盒

ELISA (Enzyme-Linkedimmunosorbent assay)的基础是抗原或的固相化及抗原或的酶标记。这一的基本原理是:①使抗原或结合到某种固相载体表面,并保持其活性。②使抗原或与某种酶连接成酶标抗原或,这种酶标抗原或既保留其活性,又保留酶的活力。在测定时,把待测样本(测定其中的或抗原)和酶标抗原或按不同的步骤与固相载体表面的抗原或起反应。用洗涤的使固相载体上形成的抗原复合物与其他分开结合在固相载体上的酶量与标本中受检的量成一定的比例。加入酶反应的底物后,底物被酶催化变为有色产物,产物的量与标本中受检的量直接相关,所以可根据颜色反应的深浅定性或定量分析。由于酶的催化速率很高,所以可地放大反应效果,从而使测定达到很高的度。

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试剂盒组成:

试剂盒组成

48孔配置

96孔配置

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说明书

1份

1份

密封袋

1个

1个

封板膜

12孔×4条

2片(96)

2-8℃保存

微孔酶标板

1×48

12孔×8条

2-8℃保存

0.3mL*6管

0.3mL*6管

2-8℃保存

品稀释液

1.5ml×1瓶

1.5ml×1瓶

2-8℃保存

酶标试剂

3 ml×1瓶

6 ml×1瓶

2-8℃保存

样品稀释液

3 ml×1瓶

6 ml×1瓶

2-8℃保存

显色剂A液

3 ml×1瓶

6 ml×1瓶

2-8℃保存

显色剂B液

3 ml×1瓶

6 ml×1瓶

2-8℃保存

终止液

3ml×1瓶

6ml×1瓶

2-8℃保存

注意:使用前请检查试剂盒中试剂的标签和数量与表格是否一致。

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人G蛋白偶联受体家族C5组成员(GPRC5A)ELISA试剂盒

洗板:手工洗板:吸去(不可触及板壁)或甩掉酶标板内的;在实验台上铺垫几层吸水纸,酶标板朝下拍几次;将推荐的洗涤缓冲液至少0.3ml注入孔内,浸泡1-2分钟。根据需要,重复此数次。 自动洗板:如果有自动洗板机,应在熟练使用后再用到正式实验中。

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试剂盒操作步骤:

实验开始前,请提前配置好所有试剂,试剂或样品稀释时,均需混匀,混匀时尽量避免起泡。每次检测都应该做曲线。如样品浓度过高时,用样品稀释液进行稀释,以使样品符合试剂盒的检测范围。

1.加样:分别设空白孔、孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液100μl,余孔分别加品或待测样品100μl,注意不要有气泡,加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀,酶标板加上盖或覆膜,37℃反应120分钟。 为实验结果有效性,每次实验请使用新的品溶液。

2.弃去,甩干,不用洗涤。每孔加生物素标记工作液 100μl(取1μl生物素标记加99μl生物素标记稀释液的比例配制,轻轻混匀,在使用小时内配制),37℃,60分钟。

3.温育60分钟后,弃去孔内,甩干,洗板3次,每次浸泡1-2分钟,350μl/每孔,甩干。

4.每孔加辣根过氧化物酶标记亲和素工作液(同生物素标记工作液) 100μl,37℃,60分钟。

5.温育60分钟后,弃去孔内,甩干,洗板5次,每次浸泡1-2分钟,350μl/每孔,甩干。

6.依序每孔加底物溶液90μl,37℃避光显色(30分钟内,此时可见品的前3-4孔有明显的梯度蓝色,后3-4孔梯度不明显,即可终止)。

7.依序每孔加终止溶液50μl,终止反应(此时蓝色立转)。终止液的加入顺序应尽量与底物液的加入顺序相同。为了实验结果的准确性,底物反应时间到后应尽快加入终止液。

8.用酶联仪在450nm波长依序测量各孔的光密度(OD值)。在加终止液后15分钟以内进行检测。

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标本的采集及保存:

  • :全血标本请于室温放置2小时或4℃过一晚后于1000 x g离心20分钟,取上清即可检测,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
  • :可用EDTA或肝素作为抗凝剂,标本采集后30分钟内于2 - 8° C 1000 x g离心15分钟,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
  • 细胞物上清或其它生物标本:1000 x g离心20分钟,取上清即可检测,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。 (注:标本溶血会影响**检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。)
  • 标本的稀释原则:通过文献检索的了解待测样本的大致含量,确定适当的稀释倍数。只有稀释至曲线的范围内,检测的结果才是准确的。稀释的中,应做好详细的记录。计算浓度时,稀释了“N”倍,标本的浓度应再乘以“N”。
  • 品的稀释原则:2瓶,每瓶临用前以样品稀释液稀释至1ml,盖好后静置10分钟以上,然后反复颠倒/搓动以助溶解,其浓度为300 pg/ml,做系列倍比稀释后,分别稀释300 pg/ml,150 pg/ml,75 pg/ml,37.5 pg/ml,18.5 pg/ml,9 pg/ml,4.5 pg/ml,样品稀释液直接作为浓度0 pg/ml,临用前15分钟内配制。 如配制150 pg/ml品:取0.5ml(不要少于0.5ml)300 pg/ml的上述品加入含0.5ml样品稀释液的Eppendorf管中,混匀即可,其余浓度以此类推。
  • 生物素标记的稀释原则:临用前以生物素标记稀释液稀释,稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制(每孔100μl),实际配制时应多配制0.1-0.2ml。如10μl生物素标记加990μl生物素标记稀释液的比例配制,轻轻混匀,在使用小时内配制。
  • 辣根过氧化物酶标记亲和素的稀释原则:临用前以辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液稀释,稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制(每孔100μl),实际配制时应多配制0.1-0.2ml。如10μl辣根过氧化物酶标记亲和素加990μl辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 的比例配制,轻轻混匀,在使用小时内配置

间接ELISA:本法主要用于检测。(DVH)的ELISA为例,间接ELISA的操作程序如下。⑴ 材料① 包被液、洗涤液、保温液、底物液、终止液;② DVH包被抗原、酶标抗、阴性及阳性DVH参考;待检鸭;③ ELISA检测仪、加样器、聚微量板。⑵ 步骤① 加抗原包被 → 4℃过夜,洗涤三次、抛干② 加待检 → 37℃ 2小时,洗涤三次、抛干③ 加酶标 → 37℃ 2小时,洗涤三次、抛干④ 加底物液 → 37℃ 30分钟,加终止液⑤ 用ELISA检测仪测定OD值,并计算出P/N比值。⑶ 结果判定 已知阳性与已知阴性的比值(P/N)≥2.1,而且已知阳性的OD值≥0.4;在上述条件成立的情况下,如果待检与已知阴性的比值(P/N)≥2.1,而且待检的OD值≥0.4,则判为阳性,否则判为阴性。

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实验结果计算:

以物的浓度为横坐标(对数坐标),OD值为纵坐标(普通坐标),在半对数坐标纸上绘出曲线,根据样品的OD值由曲线查出相应的浓度;再乘以稀释倍数;或用物的浓度与OD值计算出曲线的直线回归方程式,将样品的OD值代入方程式,计算出样品浓度,再乘以稀释倍数,即为样品的实际浓度。

绘制曲线:在Excel工作表中,以品浓度作横坐标,对应OD值作纵坐标,绘制出品线性回归曲线,按曲线方程计算各样本浓度值。

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注意事项:

1.当混合蛋白溶液时应尽量轻缓,避免起泡。

2.洗涤非常重要,不充分的洗涤易造成假阳性。

3.一次加样时间**控制在5分钟内,如标本数量多,建议使用排枪加样。

4.请每次测定的同时做曲线,做复孔。

5.如标本中待测含量过高,请先稀释后再测定,计算时请乘以稀释倍数。

6.在配制品、检测溶液工作液时,请以相应的稀释液配制,不能混淆。

7.底物请避光保存。

8.不要用其它生产厂家的试剂替换试剂盒中的试剂。

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试剂盒性能

1.准确性:品线性回归与预期浓度相关系数R值,大于等于0.9900。

2.灵敏度检测浓度小于10 pg/ml。

3.特:不与其它可溶性结构类似物交叉反应。

4.重复性:批内与批见应分别小于9%和15%。

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