打开网易新闻 查看更多图片

撰文 | 我的闺蜜老红帽

获得有效的抗原特异性CD8+T细胞是免疫治疗的首要目标。虽然接种疫苗仍是针对特异性抗原并激活免疫系统的主要方法,但其效果仍不尽人意。T细胞增殖受到T细胞耗竭的限制,因此,现代疫苗研发也要重点关注如何增强T细胞响应和扩增。举例来说,乙肝疫苗在健康小鼠中效果良好,但是,对于已经患有慢性肝炎的小鼠来说效果却不尽人意【1,2,3】,而具体原因仍不够清楚。

持续的抗原刺激可以引发表观遗传变化,从而造成一定程度的T细胞耗竭【4】。因此,我们亟需进一步了解在体内可以负向调控上述现象的机制。作者之前的工作指出,在慢性乙肝病毒感染过程中,人类自然杀伤(NK)细胞可以直接负向调控T细胞,并且,肝脏中驻留有的大量NK细胞用以行使此功能【5,6】。与之相反的是,NK细胞还具有直接的抗病毒和抗肿瘤的能力,并且通过释放干扰素gamma来辅助CD8+T细胞功能【7,8】。2022年,来自英国伦敦大学学院感染与免疫系的Mala K. Maini研究组在Science Translational Medicine上发表题为NK cells limit therapeutic vaccine–induced CD8 T cell immunity in a PD-L1–dependent manner的文章,发现肝脏驻留NK细胞可以通过上调PD-L1影响乙肝疫苗接种效果。

首先,作者研究慢性乙肝病毒感染对疫苗免疫原性的影响。作者给野生型小鼠注射腺病毒装载乙肝病毒(Ad-HBV),建立了小鼠低剂量持续感染乙肝模型。20天后,给小鼠注射乙肝疫苗,再过14天,检测小鼠肝脏和脾脏中乙肝病毒特异性T细胞响应。作者发现,与对照组未感染病毒小鼠相比,感染乙肝病毒的小鼠对疫苗的响应较差,CD8+T细胞水平也较低

作者猜测,NK细胞可能是引起上述现象的原因。为了证实这一猜测,作者在上述小鼠模型基础上,通过抗NK1.1抗体清除小鼠体内NK细胞,发现,清除NK细胞的小鼠,感染乙肝病毒再注射疫苗的小鼠,其CD8+T细胞水平要显著高于未清除NK细胞小鼠或仅注射疫苗小鼠。并且,接种疫苗之前清除NK细胞,疫苗效果要明显好于接种疫苗之后。接下来,作者研究乙肝病毒感染时,NK细胞抑制CD8+T细胞的具体机制。作者之前的工作证实PD-1在人类肝脏驻留CD8+T细胞中高表达,并且乙肝病毒感染后,PD-1水平还会上调。为了研究NK细胞是否参与PD-1水平的调节,作者检测了PD-1配基PD-L1在NK细胞上的表达情况。作者发现,与普通NK细胞和脾脏NK细胞相比,PD-L1通常表达在肝脏驻留NK细胞上。

之后,作者发现与对照小鼠相比,清除NK细胞的小鼠PD-1水平也更高。作者给接种乙肝疫苗小鼠注射抗PD-1抗体,发现拮抗PD-1可以与清除NK细胞同样达到提升CD8+T细胞水平,并且,同时拮抗PD-1和清除NK细胞并不会有叠加增强效果。上述结果证实了NK细胞是通过PD-L1调节疫苗所诱导的CD8+T细胞水平的。

综上所述,作者通过小鼠慢性乙肝病毒感染模型,确定了清除NK细胞可以增强乙肝疫苗的效果,促进抗原特异性CD8+T细胞的水平和功能。基于NK细胞的负向调控效果,作者发现感染乙肝病毒可以导致肝脏驻留NK细胞的PD-L1和T细胞的PD-1水平上调,而肝脏驻留PD-L1+NK细胞可以抑制CD8+T细胞水平。而且,抗PD-1抗体可以达到和清除NK细胞类似的效果。也就是说,NK细胞通过PD-L1对乙肝疫苗效果进行干扰。这份工作指示了提高乙肝疫苗接种效果的可行性方法。

www.science.org/doi/10.1126/scitranslmed.abi4670

参考文献

1. M. K. Maini, L. J. Pallett, Defective T-cell immunity in hepatitis B virus infection: Why therapeutic vaccination needs a helping hand.Lancet Gastroenterol. Hepatol. 3, 192–202 (2018).

2. A. D. Kosinska, T. Bauer, U. Protzer, Therapeutic vaccination for chronic hepatitis B.Curr. Opin. Virol.23, 75–81 (2017).

3. M. K. Maini, A. R. Burton, Restoring, releasing or replacing adaptive immunity in chronic hepatitis B. Nat. Rev.Gastroenterol. Hepatol.16, 662–675 (2019).

4. L. M. McLane, M. S. Abdel-Hakeem, E. J. Wherry, CD8 T cell exhaustion during chronic viral infection and cancer.Annu. Rev. Immunol.37, 457–495 (2019).

5. D. Peppa, U. S. Gill, G. Reynolds, N. J. W. Easom, L. J. Pallett, A. Schurich, L. Micco, G. Nebbia, H. D. Singh, D. H. Adams, P. T. F. Kennedy, M. K. Maini, Up-regulation of a death receptor renders antiviral T cells susceptible to NK cell–mediated deletion.J. Exp. Med. 210, 99–114 (2013).

6. W.-C. Huang, N. J. Easom, X.-Z. Tang, U. S. Gill, H. Singh, F. Robertson, C. Chang,J. Trowsdale, B. R. Davidson, W. M. Rosenberg, G. Fusai, A. Toubert, P. T. Kennedy,D. Peppa, M. K. Maini, T cells infiltrating diseased liver express ligands for the NKG2D stress surveillance system.J. Immunol.198, 1172–1182 (2017).

7. A. Martín-Fontecha, L. L. Thomsen, S. Brett, C. Gerard, M. Lipp, A. Lanzavecchia, F. Sallusto, Induced recruitment of NK cells to lymph nodes provides IFN- for TH1 priming.Nat. Immunol.5, 1260–1265 (2004).

8. K. D. Cook, S. N. Waggoner, J. K. Whitmire, NK cells and their ability to modulate T cells during virus Infections.Crit. Rev. Immunol.34, 359–388 (2014).

转载须知

【原创文章】BioArtMED原创文章,欢迎个人转发分享,未经允许禁止转载,所刊登的所有作品的著作权均为BioArtMED所拥有。BioArtMED保留所有法定权利,违者必究。